Na+k+ ——ATP酶检测试剂盒

Na⁺K⁺- ATP酶活性测定说明书

微量法 100管/48样

正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

Na⁺K⁺- ATP酶广泛分布于植物、动物、微生物和细胞中，可催化ATP水解生成ADP和无机磷。

测定原理：

Na⁺K⁺-ATP酶分解ATP生成ADP及无机磷，通过测定无机磷的量来确定ATP酶活性。

自备实验用品及仪器：

可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制：

提取液：液体100mL ×1 瓶，4℃保存。

试剂一：液体 10mL×1 瓶，4℃保存。

试剂二：粉剂×1瓶，-20℃保存；临用前加入6mL蒸馏水充分混匀待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

试剂三：液体 2mL×1 瓶，4℃保存。

试剂四：粉剂×1瓶，4℃保存。用时加入3mL蒸馏水， 4℃保存。

试剂五：粉剂×1瓶, 4℃保存。用时加入25mL蒸馏水，溶解后4℃保存一周。

试剂六：粉剂×1瓶, 4℃保存。用时加入25mL蒸馏水，溶解后4℃保存一周。

试剂七：液体25mL×1 瓶，室温保存。

试剂八：10mmol/L 标准磷贮备液 10mL×1 瓶，4℃保存。

0.5μmol/mL 标准磷应用液配制：将试剂八 20倍稀释，即取 0.1mL试剂八加1.9mL蒸馏水充分混匀。

定磷剂的配制：按H₂O: 试剂五:试剂六:试剂七=2:1:1:1 的比例配制，配好的定磷剂应为浅黄色。若无色则试剂失效，若是蓝色则为磷污染，定磷剂现用现配。

注意：配试剂最好用新的烧杯、玻棒和玻璃移液器，也可以用一次性塑料器皿，避免磷污染。

样品酶液的制备：

1、细菌、细胞或组织样品的制备：

细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（10⁴个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。

组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。

2、血清（浆）样品：直接检测。

Na⁺K⁺- ATP酶活性测定说明书操作步骤

1、分光光度计或酶标仪预热30min以上，调节波长至660nm，蒸馏水调零。

2、酶促反应（在EP管中加入下列试剂）

混匀，37℃（哺乳动物）或25℃（其他物种）准确水浴10min

混匀，8000g，25℃离心10min，取上清液

3、定磷（在EP管或96孔板中加入下列试剂）

混匀，室温放置30min，在 660nm处，记录各管吸光值。

注意：

1、由于每一个样都必须做对照，本试剂盒100管保证测 48份Na⁺K⁺-ATP酶。

2、此法具有微量、灵敏、快速的特点。所以对测定所用试管要求严格无磷。

3、空白管和标准管只要做一管。

计算

1、血清（浆）Na⁺K⁺-  ATPase活力的计算:

定义：每小时每毫升血清（浆）中Na⁺K⁺- ATP 酶分解ATP 产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na⁺K⁺-ATP酶活力（μmol/h/mL）=[C标准管×V总]×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷V样÷T=7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）

2、组织、细菌或细胞中Na⁺K⁺- ATPase活力的计算：

（1）按蛋白浓度计算：

定义：每小时每毫克组织蛋白中Na⁺K⁺- ATP 酶分解ATP 产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na⁺K⁺-ATP酶活力(μmol/h /mg prot)=[C标准管×V总]×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷（Cpr×V样）÷T =7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷Cpr

（2）按样本鲜重计算：

定义：每小时每克组织中Na⁺K⁺-ATP 酶分解ATP 产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na⁺K⁺-ATP酶活力(μmol/h /g 鲜重)=[ C标准管×V总]×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷(W× V样÷V样总)÷T=7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷W

（3）按细菌或细胞密度计算：

定义：每小时每1万个细菌或细胞中Na⁺K⁺-ATP 酶分解ATP 产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na⁺K⁺-ATP酶活力(μmol/h /10⁴ cell) =[ C标准管×V总]×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷(500×V样÷V样总)÷T=0.015×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）

C标准管：标准管浓度，0.5μmol/mL；V总：酶促反应总体积，0.25mL；V样：加入样本体积，0.1mL ；V样总：加入提取液体积，1mL；T：反应时间，1/6小时；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本鲜重，g；500：细菌或细胞总数，500万。